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Offre : Formation - DU Diagnostic de l'infertilité et aide médicale à la procréation -

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UFR de Médecine Paris 5 (Paris)

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M. Jessica Lorenzetti
En poste
PROFESSION RECHERCHE

Médecine

TYPES DE CONTRATS

Formation diplômante

RÉGION / DÉPARTEMENT

Paris (75)

PUBLIÉE LE
2013-02-17
TEMPS DE TRAVAIL

Temps plein et temps partiel

Descriptif de l'offre

Présentation :

DIPLOME SUSPENDU POUR L'ANNEE UNIVERSITAIRE 2012/2013

Le DU se compose de 3 modules obligatoires et 2 modules optionnels.

Volume horaire :

  • Cours théoriques : 77 heures
  • Travaux dirigés : 19 heures

Le diplôme accueille chaque année 10 étudiants au minimum.

 

Objectifs :

Acquisition des bases théoriques et pratiques et transfert des technologies les plus récentes en Biologie de la Reproduction, notamment des actes biologiques nécessaires au diagnostic et au traitement de l’infertilité masculine, à l’évaluation du pouvoir fécondant du spermatozoïde et des actes techniques d’Aide à la Procréation.

 

Programme :

Le DU « Diagnostic de l’infertilité et Aide Médicale à la Procréation » est organisé sous  forme de modules obligatoires et optionnels. Il s’obtient en capitalisant trois modules  obligatoires et au moins deux modules optionnels, le total horaire devant être égal au moins à  96 heures.


MODULES OBLIGATOIRES : MODULES I, II et III

  • Module I : SPERMIOLOGIE (J. Auger, F. Eustache) : 35 heures

    • Equipe pédagogique : J. Auger, F. Eustache, P. Jouannet, J.-M. Kunstmann, techniciens  hospitaliers et universitaires (C. Le Bon, G. Liméa, C. Lesaffre).

  • Cours théoriques :

    • Spermogramme – spermocytogramme (3h00)
    • Interaction spermatozoïde – glaire cervicale : test de pénétration in vitro, test de Hühner (1h30) 
    • Techniques de préparation de sperme en vue d’Aide Médicale à la Procréation (3h00)
    • Anticorps anti-spermatozoïdes : recherche directe sur les spermatozoïdes (Martest, immunobilles), recherche dans le plasma séminal, le sérum et la glaire cervicale (1h30)
    • Recueil et préparation des spermatozoïdes en cas d’éjaculation rétrograde (0h30)
    • Biochimie séminale (1h00)
    • Assurance qualité et contrôle de qualité en spermiologie (2h00)
    • Les inséminations intra-utérines (1h00)
    • Travaux pratiques :

      • Spermogramme – spermocytogramme (8h00)
      • Interaction spermatozoïde – glaire cervicale : test de pénétration in vitro, test de Hühner (2h00)
      • Techniques de préparation de sperme en vue d’AMP (6h00)
      • Anticorps anti-spermatozoïdes : recherche directe sur les spermatozoïdes (Martest, immunobilles), recherche dans le plasma séminal, le sérum et la glaire cervicale (1h30)
    • Travaux dirigés: 

      • Interprétation de la biochimie du plasma séminale et de la spermoculture (1h30)
      • Rédaction de conclusion d’examens en spermiologie (1h30)
      • Présentation du CECOS (1h00)
    • Soit sur cinq jours: 

      • Cours théoriques : 13h30

      • Travaux pratiques : 17h30

      • Travaux dirigés : 4h

  • Module II : FECONDATION IN VITRO SANS MICROMANIPULATION (C. Patrat) : 35 heures

    • Equipe pédagogique : C. Patrat, techniciens hospitaliers et universitaires (Jean-Claude Julliard, C. Lesaffre).

    • Cours théoriques: 

      • Rappel sur l’analyse du sperme et les techniques de sélection des spermatozoïdes mobiles

      • Evaluation de la qualité du sperme pour FIV (1H00)

      • Techniques de préparation du sperme dans des situations particulières (oligoasthénostératospermie – anticorps anti-spermatozoïdes – éjaculation rétrograde – infection spermatique chronique – atteinte neurologique) (1H00)

      • Organisation générale et étapes de déroulement d’une FIV (2H00)

      • Aspects cliniques de la FIV (indications, bilan, stimulation et monitorage – ponction folliculaire) (2H00)

      • Décoronisation et observation des zygotes (1h00)

      • Préparation des milieux et conditions de culture ovocytaire et embryonnaire (1h00)

      • Evaluation de la qualité embryonnaire, politique de transfert embryonnaire et transfert embryonnaire (1h00)

      • Evaluation : Bilans FIVNAT, bilans ministériels, suivi des grossesses et des enfants après FIV (2h00)

      • Loi, réglementation et éthique (2h00)

      • Assurance et contrôle de qualité en FIV (2h00)

    • Travaux dirigés 

      • Préparation du sperme (1h00)
      • Discussion de dossiers (1h30)
      • Evaluation sur documents photographiques et en vidéographie de la qualité des ovocytes fécondés et non fécondés et des embryons aux différents stades de leur développement (3h30)
    • Travaux pratiques

      • Préparation des spermatozoïdes pour la FIV (2h00)
      • Deux séances de réalisation de FIV chez la souris : préparation du matériel, des ovocytes, réalisation de la FIV, culture embryonnaire chez la souris, préparation des cathéters de transferts embryonnaires (14 heures)
    • Soit sur cinq jours :

      • cours théoriques : 15 heures

      • travaux dirigés : 6 heures

      • travaux pratiques : 14heure               

  • Module III : PRISE EN CHARGE DE L’AIDE MEDICALE A LA PROCREATION: ASPECTS ORGANISATIONNELS ET MEDICAUX – ASPECTS SPÉCIFIQUES CONCERNANT LA PRISE EN CHARGE DES COUPLES À RISQUE VIRAL IDENTIFIE (E. Dulioust, JM Kunstmann) : 14 heures

    • Equipe pédagogique : E. Dulioust, J.M. Kunstmann, C. Patrat, N. Thiounn, M. Leruez-Ville,  technicien hospitalier (Jean-Claude Julliard)

    • Cours théoriques: 

      •  L’Assistance médicale à la Procréation (AMP) : rappel des techniques courantes, les techniques innovantes et perspectives (1 heure)
      • Organisation d’un centre d’AMP : rôle et responsabilité respectifs du biologiste et du clinicien : liens et complémentarité (0 heure30)
      • Aspects cliniques : monitorage de l’induction de l’ovulation, insémination intra-utérine, prélèvement d’ovocytes et transfert d’embryons (1 heure)
      • Programme informatique et base de données – évaluation des résultats (0 heure 30)
      • Acquisition des bases théoriques pour la prise en charge en AMP de couples dont  l’homme et/ou la femme est porteur du VIH, VHC et/ou VHB. Apprentissage des  différentes techniques de préparation de sperme à risque viral. (7heures)
      • Organisation : 14 heures - 2 jours – 25% TD
    • Travaux dirigés : 

      • Indications, résultats et limites des différentes méthodes d’AMP : analyse de dossiers et de cas cliniques (3 heures)
      • Aspects réglementaires, juridiques et éthiques (à partir de cas cliniques) (1 heure)
    • Soit sur deux jours :

      • Cours théoriques : 10 heures

      • Travaux dirigés : 4 heures

  • MODULES OPTIONNELS : MODULES IV, V, VI, VII, VIII, IX ET X Module IV : FECONDATION IN VITRO AVEC MICROMANIPULATION (P. Fauque) : 21 heures

    • Equipe pédagogique : P. Fauque, technicien universitaire (C. Lesaffre).

    • Cours théoriques 

      • Organisation générale et étapes de déroulement d’une Fécondation In Vitro avec micromanipulation (1h00)
      • Techniques de micro-injection (présentation du matériel, principes de la technique et de la confection des pipettes) (1h00)
      • Principes de la préparation des boîtes pour la culture, la décoronisation et la microinjection (1h00)
      • Techniques de décoronisation des ovocytes (1h00)
      • Préparation des spermes (1h00)
    • Travaux pratiques: 

      • Préparation des boîtes pour la culture, la décoronisation et la microinjection (1h00)
      • Décoronisation des ovocytes (2h00)
      • Préparation de sperme (1h00)
      • Mise en place des pipettes de micro-injection (2h00)
      • Réalisation pratique d’une microinjection par les stagiaires sur différents postes de micromanipulation (10h00)
    • Soit sur trois jours :

      • Cours théoriques : 5h

      • Travaux pratiques : 16h00

 

  • Module V : CONGÉLATION DE SPERME ET D’EMBRYONS (E. Dulioust) : 21 heures

    • Equipe pédagogique : E. Dulioust, J.M. Kunstmann, J. Auger, C. Patrat, P. Fauque, techniciens hospitaliers et universitaires (C. Le Bon, C. Lesaffre).

    • Cours théoriques: 

      • Aspects théoriques de la congélation des cellules, du sperme et des embryons (1h30)
      • Indications de la congélation du sperme humain – Stratégies possibles d’utilisation du sperme congelé – Assurance et contrôle de qualité (1h30)
      • Congélation et décongélation de spermatozoïdes prélevés chirurgicalement (1h30)
      • Aspects réglementaires et éthiques de la conservation des gamètes et des embryons (1h)
      • Congélation et décongélation de gamètes et d’embryons à risque viral (1 h30)
      • Perspectives d’avenir (ovocytes, tissu gonadique) (1h30)
    • Travaux dirigés: 

      • Présentation et fonctionnement des appareils à congélation pour sperme et embryons (2h)
      • Gestion d’une banque de sperme et d’embryons – Présentation du CECOS (1h30)
    • Travaux pratiques: 

      • Congélation et décongélation de spermatozoïdes humains éjaculés (2h)
      • Congélation et décongélation d’embryons de souris (6h)
      • Préparation d’un sperme congelé en vue d’Aide Médicale à la Procréation (1h)
    • Soit sur trois jours

      • Cours théoriques : 8 h 30

      • Travaux dirigés : 3 h 30

      • Travaux pratiques : 9 h

  • Module VI : ANALYSE MORPHOLOGIQUE DES SPERMATOZOÏDES (J. Auger, F. Eustache) : 14 heures

    • Equipe pédagogique : J. Auger, F. Eustache, techniciens hospitaliers et universitaires (F. Roques, C. Lesaffre).

    • Cours théoriques: 

      • Les recommandations de l’OMS de 1999 (0h30)
      • La classification de David modifiée : pourquoi ? comment ? (1h00)
      • Techniques de préparation et de coloration d’un frottis (1h)
      • Reconnaissance des cellules rondes : comment ? pourquoi ? exemples concrets (1h00)
      • Intérêt clinique de l’évaluation de la morphologie spermatique : état des connaissances et analyses de dossiers (1h00)
    • Travaux pratiques: 

      • Description de la morphologie spermatique (en commun sur vidéo-microscope et individuellement sur microscope) (7h30)
      • Contrôle de qualité de l’analyse morphologique (2h)
    • Soit sur deux jours

      • cours théoriques : 4h30

      • travaux pratiques : 9h30

  • Module VII : FONCTION NUCLÉAIRE DES SPERMATOZOÏDES (J.M. Dupont, J. Auger) (7 heures)

    • Equipe pédagogique : J.M. Dupont, J. Auger, F. Eustache, techniciens hospitaliers et  universitaires (C. Lesaffre).

    • Cours théoriques: 

      • Cytogénétique humaine : Méthodes et domaines d’application, rappels sur la structure des chromosomes, technique d’observation des chromosomes, anomalies chromosomiques, applications en clinique (2 heures)
      • Cytogénétique moléculaire : Principes des techniques, sondes d’hybridation, technique d’hybridation in situ, cas particulier de l’hybridation interphasique, application aux spermatozoïdes (2 heures)
      • Organisation nucléaire du spermatozoïde humain.
    • Travaux pratiques: 

      • Hybridation : Présentations des cas cliniques (3 heures)
    • Soit au total sur un jour: 

      • cours théoriques : 4 heures

      • travaux dirigés : 3 heures

  • Module VIII : EVALUATION DE LA CAPACITÉ FÉCONDANTE DES SPERMATOZOÏDES (C. Serres, J. Auer, C. Patrat, A. Ziyyat) (21 heures)

    • Equipe pédagogique : C. Serres, J. Auer, C. Patrat, A. Ziyyat

    • Cours théoriques: 

      • Méthodes d’évaluation du mouvement des spermatozoïdes (0h30)
      • Méthodes d’évaluation de la réaction acrosomique (1h 00)
      • Méthodes d’évaluation de liaison des spermatozoïdes à la zone pellucide et de la fusion spermatozoïde – ovocyte (2h30)
    • Travaux dirigés :

      • Indications et interprétation des résultats (à partir de cas cliniques) (2 heures)
    • Travaux pratiques: 

      • Mise en évidence de la réaction acrosomique spontanée et induite, en microscopie à fluorescence et en cytométrie en flux (5 h00)
      • Test de liaison des spermatozoïdes à la zone pellucide (4h00)
      • Test de pénétration des ovocytes de hamster dépellucidés (6 heures)
    • Soit sur trois jours :

      • cours théoriques : 4 heures

      • travaux dirigés : 2 heures

      • travaux pratiques : 15 heures

  • Module IX : Investigation génétique dans la stérilité masculine (T. Bienvenu, C. Patrat, F. Baverel) (16 h00)

    • Equipe pédagogique : T. Bienvenu, C. Patrat, F. Baverel, G. Viot

    • Cours théoriques: 

      • Aspects génétiques de l’infertilité masculine (2h00)
      • Cytogénétique humaine : Méthodes et domaines d’application, rappels sur la structure des chromosomes, technique d’observation des chromosomes, anomalies chromosomiques, applications en clinique (2 h00)
      • Principes des techniques de biologie moléculaire utilisées (PCR multiplex, Southern Blot, DGGE) (2h00)
    • Travaux dirigés :

      • Indications et résultats de la demande de caryotype constitutionnel et de la recherche de microdélétion du chromosome Y, analyse de dossiers (1 h30)
      •  Le conseil génétique en cas d’anomalies chromosomiques et microdélétion du chromosome Y : à partir d’un cas clinique (1h30)
    • Travaux pratiques :

      • Réalisation d’une PCR multiplex permettant l’étude moléculaire du chromosome Y (5h00)
      • Interprétation des résultats en fonction des différentes techniques de biologie moléculaire utilisées (2h00)
    • Soit sur deux jours: 

      • cours théoriques : 4h00

      • travaux dirigés : 2h00

      • travaux pratiques : 6h00

  • Module X : INFERTILITÉ MASCULINE, BIOPSIE TESTICULAIRE ET PRELEVEMENTS CHIRURGICAUX DE SPERMATOZOIDES EN VUE D’AIDE MEDICALE A LA PROCREATION (A. Vieillefond, J.-M. Kunstmann, N. Thiounn) (7 heures)

    • Equipe pédagogique : A. Vieillefond, C. Patrat, N. Thiounn, J.-M. Kunstmann, technicien hospitalier (C. Le Bon)

    • Cours théoriques: 

      • Indications de la biopsie testiculaire et des prélèvements chirurgicaux de spermatozoïdes en cas d’infertilité masculine- Conditions et organisation technique du prélèvement (1h30)

      • Cryoconservation des spermatozoïdes testiculaires et épididymaires et utilisation (1h00)

      • Description des différentes techniques d’anatomo-pathologie utilisées dans les biopsies testiculaires (1h30)

    • Travaux dirigés: 

      • Etude de cas cliniques (1h00)
    • Travaux pratiques : 

      • Analyse de biopsies testiculaires normales et pathologiques (commune par vidéo-projection et  individuelle sur microscope) (3 h00)
    • Soit sur une journée: 

      • cours théoriques : 3h00
      • travaux dirigés : 1h00
      • travaux pratiques : 3h00


Selon le choix des modules optionnels , la durée d’enseignement (5 modules) varie de 96  à 129 heures (moyenne 105 heures). La formation ne comporte pas de stage.


Règlement d'examen :

  • Contrôle continu pour chaque module (validation conservable 2 ans)

  • Examen de fin d'études (une seule session annuelle) :

  • une épreuve écrite notée de 0 à 20 (coefficient 0.5)

  • rédaction d'un mémoire notée de 0 à 20 (coefficient 0.5)

La soutenance doit avoir lieu avant le 31 décembre de l'année universitaire suivante

Les candidats ayant validé les 3 modules obligatoires et au moins 2 modules optionnels et ayant obtenu une note au moins égale à 10/20 sont déclarés admis

 

Admissions et inscriptions :

Conditions d’accès :

Sont admis à s'inscrire:

  • Les médecins biologistes titulaires du DES de biologie médicale ou diplôme équivalent
  • Les pharmaciens biologistes titulaires du DES de biologie médicale ou d'un diplôme équivalent
  • Les techniciens d'analyses biologiques titulaires du DELAM, DETAB, BTS ou DUT d'analyses biologiques ou d'un diplôme équivalent
  • Les scientifiques titulaires d'une maîtrise de biologie ou d'un diplôme équivalent
  • Les étrangers titulaires d'un diplôme équivalent
  • Les candidats jugés aptes à suivre l'enseignement par le directeur de l'enseignement et autorisés par le conseil pédagogique
 

Formalités d’inscription :

DIPLOME SUSPENDU POUR L'ANNEE UNIVERSITAIRE 2012/2013


Contact :

  • Responsable(s) du diplôme :

Professeur Jean-Philippe Wolf


  • Coordinateur(s) pédagogique(s) :

Docteur Catherine Patrat 

Téléphone :  +33 (0) 1 58 41 15 71 
Fax : +33 (0) 1 58 41 15 75

Secrétariat pédagogique :

Hôpital Cochin

Service d’histologie, embryologie, biologie de la reproduction

27, rue du Faubourg-Saint-Jacques 75014 PARIS

Métro : Port-Royal, ligne RER B

 

  • Service Commun de Formation Continue :

Formation médicale continue 

Téléphone :  +33 (0) 1 42 86 22 30 
Fax : +33 (0) 1 42 86 21 59 
Courriel : [email protected]

45, rue des Saints-Pères

8e étage

75006 Paris

Renseignements concernant la formation continue (devis, demande de prise en charge, etc.)

 

Lien fiche

 

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